This website works best with JavaScript enabled
Министерство здравоохранения Республики Беларусь

Преаналитический этап выполнения лабораторных исследований у пациентов с патологией бронхолегочной системы

 

СПИСОК ПУБЛИКАЦИЙ

 

Статьи в журналах РБ:

 

  1. Борисенко Т.Д., Михасёв М.Н., Барсукевич Э.С., Тарасюк И.В. Опыт создания первого центра микроскопической диагностики туберкулёза в Гомельской области //Медицина.-2010.-№1.-С.14-16.
  2. Борисенко Т.Д., Тарасюк И.В., Сагальчик Е.Р. Актуальные вопросы детекции и видовой идентификации нетуберкулёзных микобактерий в Республике Беларусь//Здравоохранение.- 2010. - №4. – С. 30-33.
  3. Л.К. Суркова, Е.Р. Сагальчик, Т.Д. Борисенко, О.М. Залуцкая Распространённость нетуберкулёзных микобактерий, проблемы диагностики и лечения микобактериозов // Известия национальной академии наук Беларуси. Серия медицинских наук. – 2011. - №2. – С.12-18.
  4. Суркова Л.К., Залуцкая О.М., Борисенко Т.Д., Сагальчик Е.Р. Клинико-бактериологические проявления микобактериоза лёгких // Известия национальной академии наук Беларуси. Серия медицинских наук. – 2012. - №1. – С.80-84.

 

Статьи в рецензируемых сборниках научных трудов:

 

  1. Борисенко Т.Д. Особенности первичной лекарственной устойчивости микобактерий туберкулёза у больных ВИЧ-ассоциированным туберкулёзом// Рецензируемый сборник научных статей по материалам ежегодной научной конференции «Актуальные вопросы современной клинической медицины». – Гродно. – 2009.
  2. Борисенко Т.Д. Бактериологическая диагностика микобактериозов в Гомельской области// Рецензируемый сборник научных статей по материалам ежегодной научной конференции «Актуальные вопросы современной клинической медицины». – Гродно. – 2009.
  3. Борисенко Т.Д., Михасёв М.Н., Шевцова А.В., Шаршакова Т.М., Тарасюк И.В., Суркова Л.К. Опыт использования автоматизированной системы BACTEC MGIT 960 в диагностике туберкулёза в Гомельской области//Сборник научных статей Республиканской научно-практической конференции посвящённой 20-летию Гомельского государственного медицинского университета. – Гомель. – 2011. – Том 1. - С.51-54
  4. Борисенко Т.Д., Михасёв М.Н., Ширяев А.С., Шаршакова Т.М., Тарасюк И.В., Суркова Л.К. Проблемы выделения нетуберкулёзных микобактерий и диагностики микобактериозов в Гомельской области//Сборник научных статей Республиканской научно-практической конференции посвящённой 20-летию Гомельского государственного медицинского университета. – Гомель. – 2011. – Том 1. - С.54-58
  5. Михасёв М.Н., Борисенко Т.Д., Бурвель П.И., Шаршакова Т.М., Тарасюк И.В., Суркова Л.К. Множественная лекарственная устойчивость среди пациентов с ВИЧ-ассоциированным туберкулёзом в Гомельской области//Сборник научных статей Республиканской научно-практической конференции посвящённой 20-летию Гомельского государственного медицинского университета. – Гомель. – 2011. –Том 3. -  С.72-74
  6. Михасёв М.Н., Борисенко Т.Д., Бутько С.В., Шаршакова Т.М., Тарасюк И.В., Суркова Л.К. Анализ социальных предикторов и особенностей клинического течения ВИЧ-ассоциированного туберкулёза у впервые выявленных больных в Гомельской области//Сборник научных статей Республиканской научно-практической конференции посвящённой 20-летию Гомельского государственного медицинского университета. – Гомель. – 2011. –Том 3. -  С.75-78
  7. Т.Д. Борисенко, М.Н. Михасёв, Д.Ю. Рузанов, Т.М. Шаршакова, Л.К. Суркова Значение нетуберкулёзных микобактерий в инфекционной патологии в Гомельской области // Сборник материалов II международной научно-практической конференции «Интегративный подход к проблемам туберкулёза и ВИЧ-инфекции». – Гомель. – 2011. – С.35-38
  8. М.Н. Михасёв, Т.Д. Борисенко, С.В. Бутько, Д.Ю. Рузанов, Т.М. Шаршакова, Л.К. Суркова Анализ причин роста лекарственно-устойчивых форм туберкулёза в Гомельской области// Сборник материалов II международной научно-практической конференции «Интегративный подход к проблемам туберкулёза и ВИЧ-инфекции». – Гомель. – 2011. – С.146-148.
  9. Е.В. Разумовская, Т.Д. Борисенко, В.Н. Бондаренко, С.В. Помазанский, Н.А. Филимонова Клинико-рентгенологические особенности пневмоний у ВИЧ-инфицированных пациентов в Гомельской области//Сборник научных статей Республиканской научно-практической конференции «Актуальные проблемы медицины». – Гомель. – 2012.
  10. Т.Д.Борисенко, Е.В. Разумовская, Д.Ю. Рузанов, Р.В. Тетерев Анализ факторов риска развития антибиотикорезистентности у пациентов с внегоспитальными пневмониями//Сборник научных статей Республиканской научно-практической конференции «Актуальные проблемы медицины». – Гомель. – 2012.

 

Тезисы  докладов, опубликованные в РБ:

 

  1. Борисенко Т.Д., Михасев М.Н. Пути оптимизации лабораторной службы в рамках реализации программы  «Туберкулёз» // Тезисы научно-практической конференции. – Гомель. – 2007. – С. 26-29.
  2. Борисенко Т.Д., Сагальчик Е.Р. Проблемные вопросы лабораторной диагностики туберкулёза в системах общего и пенитенциарного здравоохранения // Материалы 4-ой международной научно-практической конференции «Актуальные вопросы пенитенциарной медицины. Туберкулёз и другие социально-значимые заболевания в местах лишения свободы». – Минск. – 2009. - С.21-27.
  3. Борисенко Т.Д., Щур Е.А. Возбудители сопутствующих неспецифических заболеваний органов дыхания у больных туберкулёзом // Материалы международной научно-практической конференции «Первые итоги работы фтизиатрической службы по внедрению стратегии «Stop-TB» в практическое здравоохранение. – Гродно. – 2009. – С.29-34.
  4. Михасёв М.Н., Борисенко Т.Д. Особенности работы противотуберкулёзной службы Гомельской области в условиях эпидемии ВИЧ-ассоциированного туберкулёза // Материалы международной научно-практической конференции «Первые итоги работы фтизиатрической службы по внедрению стратегии «Stop-TB» в практическое здравоохранение. – Гродно. – 2009. – С.76-79.
  5. Борисенко Т.Д. Совершенствование видовой идентификации микобактерий в диагностике туберкулёза и микобактериоза// Материалы международной научно-практической конференции «Первые итоги работы фтизиатрической службы по внедрению стратегии «Stop-TB» в практическое здравоохранение. – Гродно. – 2009. – С.90-95.
  6. Борисенко Т.Д., Бутько С.В., Можарова О.В. Анализ лекарственной устойчивости микобактерий туберкулёза у больных туберкулёзом в Гомельской области // Материалы международной научно-практической конференции «Первые итоги работы фтизиатрической службы по внедрению стратегии «Stop-TB» в практическое здравоохранение. – Гродно. – 2009. – С.157-163.
  7. Т.Д.Борисенко, М.Н. Михасёв Опыт организации системы внешнего контроля качества лабораторных исследований в рамках реализации стратегий DOTS и DOTS Plus в Гомельской области// Сборник материалов I международной научно-практической конференции студентов, молодых учёных и специалистов «Я могу остановить туберкулёз».- Гомель. -  2010. – С.14-16.
  8. Т.Д. Борисенко, М.Н. Михасёв, Д. Ю. Рузанов Гиподиагностика туберкулёза в лабораториях Гомельской области: причины и пути решения проблемы. // Сборник материалов I международной научно-практической конференции студентов, молодых учёных и специалистов «Я могу остановить туберкулёз».- Гомель. - 2010. – С.17-20.
  9. Т.Д.Борисенко, А.С. Ширяев, С.В. Бутько, Д.Ю. Рузанов Чувствительность к противотуберкулёзным препаратам микобактерий у больных с множественной лекарственной устойчивостью // Материалы республиканской научно-практической конференции «Итоги реализации государственной программы «Туберкулёз» и внедрение научных достижений в практическое здравоохранение». – Минск. – 2010. – С.56-59.
  10. Т.Д. Борисенко, М.Н. Михасёв, Д.Ю. Рузанов Анализ причин отставаний лабораторий противотуберкулёзной службы // Материалы республиканской научно-практической конференции «Итоги реализации государственной программы «Туберкулёз» и внедрение научных достижений в практическое здравоохранение». – Минск. – 2010. – С.69-72.
  11. Л.К. Суркова, Т.Д. Борисенко, Е.Р. Сагальчик Проблемы выделения нетуберкулёзных микобактерий и лабораторной диагностики микобактериозов // Материалы республиканской научно-практической конференции «Итоги реализации государственной программы «Туберкулёз» и внедрение научных достижений в практическое здравоохранение». – Минск. – 2010. – С.65-68.

 

Инструкции по применению:

 

  1. Порядок проведения преаналитического этапа лабораторных исследований в УГОТКБ: инструкция по применению / Борисенко Т.Д.; У «Гомельская областная туберкулёзная клиническая больница». – Гомель. – 2010. – 39 с.
  2. Забор, хранение и транспортировка инфекционного материала для лабораторной диагностики высокопатогенного гриппа А (H1N1) и других вирусных инфекций: инструкция по применению / Борисенко Т.Д.; У «Гомельская областная туберкулёзная клиническая больница». – Гомель. – 2010. – 26 с.
  3. Организация преаналитического этапа лабораторных исследований у пациентов с заболеваниями органов дыхания: инструкция по применения / Т.Д. Борисенко, М.Н. Михасёв, И.В. Тарасюк, Д.Ю. Рузанов, А.А. Кудря /; У «Гомельская областная туберкулёзная клиническая больница». – Гомель. – 37 с.
  4. 1 акт внедрения Инструкции по применению «Порядок проведения преаналитического этапа лабораторных исследований в УГОТКБ»
  5. 1 акт внедрения Инструкции по применению «Забор, хранение и транспортировка инфекционного материала для лабораторной диагностики высокопатогенного гриппа А (H1N1) и других вирусных инфекций»
  6. 25 актов внедрения Инструкции по применению «Организация преаналитического этапа лабораторных исследований у пациентов с заболеваниями органов дыхания: инструкция по применения»

 

Учебно-методическое пособие:

 

  1. Преаналитический этап выполнения лабораторных исследований у пациентов с патологией бронхолегочной системы: учебно-методическое пособие / Борисенко Т.Д., Камышников В.С.; М-во здравоохранения Респ. Беларусь, Белорус. мед. акад. последипломного образования. - Мн.: БелМАПО, 2011. – 33 с.

 

 

 

 

 

 

МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ

УЧРЕЖДЕНИЕ ГОМЕЛЬСКАЯ ОБЛАСТНАЯ ТУБЕРКУЛЁЗНАЯ КЛИНИЧЕСКАЯ БОЛЬНИЦА

УТВЕРЖДАЮ

Главный врач УГОТКБ

____________________  М.Н. Михасёв

«_05_»_________07___________2010 г.

Обеспечение качества проведения преаналитического этапа лабораторных исследований в УГОТКБ

Инструкция по применению

 

 

г. Гомель, 2010

Составитель:

заведующая клинико-диагностической лабораторией У «Гомельская областная туберкулёзная клиническая больница» Т.Д. Борисенко

 

Рецензенты:

заведующий Центральной научно-исследовательской лабораторией Белорусской медицинской академии последипломного образования к.м.н. доцент И.В. Тарасюк

заведующий кафедрой фтизиопульмонологии ГУО «Гомельский государственный медицинский университет» к.м.н. Д.Ю. Рузанов

главный специалист по клинической лабораторной диагностике УЗ Гомельского областного исполнительного комитета  А.А. Кудря

 

В настоящее время лабораторным методам исследования отводится ключевая роль в диагностике и лечении туберкулёза и других заболеваний органов дыхания. При обследовании пациентов с заболеваниями лёгких большое значение имеют организационные аспекты лабораторной диагностики, обеспечение точности и правильности лабораторных исследований, применение стабильных, технически надежных аналитических методов, проведение контроля качества исследований.

В учреждениях здравоохранения Гомельской области используется достаточно широкий арсенал лабораторных методов, причём наряду с унифицированными рутинными методиками применяются и современные методы исследования, обладающие высокой специфичностью и информативностью.

Внедрение в практику здравоохранения Гомельской области высокоспецифичных лабораторных методов диагностики заболеваний органов дыхания, таких как автоматизированная система ускоренной детекции микобактерий ВАСТЕС MGIT 960, анализаторы газов крови, молекулярно-генетических методов исследования на основе ПЦР и др. требует стандартизации на всех этапах диагностического процесса.

Доля ошибок преаналитического этапа в общем числе лабораторных ошибок составляет от 50% до 95%. Ошибки, возникающие на преаналитическом этапе лабораторных исследований, обесценивают весь дальнейший ход лабораторных исследований, приводят к потере значительных средств, дискредитируют лабораторные методы в глазах лечащего врача из-за недостоверности получаемых результатов. Из-за специфики заболеваний органов дыхания, имеющих преимущественно аэрогенный путь передачи, ошибки в диагностике подвергают риску не только здоровье пациента, но и представляют опасность для эпидемиологической безопасности региона в целом.

Для всех видов лабораторных исследований, преаналитический этап объединяет комплекс процессов перед собственно лабораторным анализом, который состоит из:

  • подготовки обследуемых;
  • получения биоматериала (крови, мочи и др.);
  • транспорта биоматериала в лабораторию;
  • первичная обработка биоматериала в лаборатории;
  • распределение и хранение биоматериала в лаборатории.

Основная задача этих этапов преаналитического процесса — обеспечение стабильности (сохранности) компонентов биоматериалов, взятых на исследование, и сведение к минимуму влияния различных факторов, изменяющих их качество.

Вместе с тем для дополнительного обследования пациентов с патологией органов дыхания и полиорганностью поражений при туберкулезе используются  патологический материал других органов и систем. В связи с этим, рассмотрен преаналитический этап не только лабораторных исследований, используемых сугубо для диагностики патологии легочной системы, но и широкого спектра биохимических, гематологических, общеклинических, микробиологических, вирусологических исследований.

 

Область применения

Инструкция предназначена для применения в организациях здравоохранения на стационарном и амбулаторном этапе.

Перечень необходимого лабораторного оборудования, реактивов и расходных материалов

Лабораторная посуда, расходные материалы

1.    Шприцы инъекционные однократного применения с иглами (2мл, 5 мл, 10 мл, 20 мл)

2.    Вакуумные пластиковые или стеклянные системы однократного применения с пункционными иглами или иглами-бабочками.

3.    Стекла предметные.

4.    Скарификаторы стерильные.

5.    Контейнеры пластиковые для сбора биологических жидкостей в индивидуальной упаковке.

6.    Жгут кровоостанавливающий.

7.    Пробирки стеклянные центрифужные градуированные и неградуированные.

8.    Пробирки полистирольные центрифужные мерные с пробкой.

9.    Пробирки Эппендорфа.

10.  Пробирки пластиковые конические с крышкой стерильные 50 мл.

11.  Наконечники пластиковые для дозаторов пипеточных.

12.  Двухфазная среда для забора крови.

13.  Стерильные ватные тампоны.

14.  Контейнер медицинский.

15.  Контейнер лабораторный КЛ-10, КЛ-16.

16.  Петля бактериологическая.

17.  Капилляры Панченкова.

18.  Сифон для забора промывных вод бронхов через манипуляционный канал фибробронхоскопа.

Лабораторное оборудование

1.     Центрифуга лабораторная на 1000-3000 об/мин.

2.     Холодильник бытовой (2-80С) с морозильной камерой (-200С).

3.     Ингалятор аэрозольный.

4.     Фибробронхоскоп.

5.     Дозаторы пипеточные одноканальные постоянного и переменного объёма (10 мкл, 50 мкл, 100 мкл, 200 мкл, 1 мл, 5-50 мкл, 50-200 мкл, 200-1000 мкл, 1-5 мл).

6.     Спиртовка.

Реактивы

1.     3,8% раствор цитрата натрия.

2.     0,9% раствор хлорида натрия

3.     70% раствор спирта этилового.

4.     5% спиртовой раствор йода.

5.     10% водный раствор трёхзамещённого фосфорнокислого натрия.

6.     0,05-0,1% раствор хлоргексидина биглюконата.

7.     2-3% раствор борной кислоты.

8.     Раствор гепарина 5000 Ед/мл.

Возможные источники ошибок и пути их устранения

Неправильная подготовка больного к лабораторному исследованию, несоблюдение условий взятия, хранения, транспортировки, первичной обработки биоматериала. Стандартизация преаналитического этапа позволит в значительной мере сократить количество ошибок.

Противопоказания

Противопоказания к проведению фибробронхоскопии могут ограничивать забор промывных вод бронхов и БАЛЖ.

 

Преаналитический этап клинических лабораторных исследований

1. Подготовка пациентов

Наиболее распространенным материалом для лабораторных исследований является кровь, моча и некоторые другие биологические жидкости.

Взятие материала для лабораторных исследований должно проводиться до принятия обследуемым пищи (натощак). Последний прием пищи за 8-12 часов (12 часов для исследований липидного спектра) до взятия. Исключением из этого правила являются исследования, которые проводятся при неотложных состояниях, в любое время, но с учетом этого фактора.

Время взятия с 7 до 9 ч утра при плановых исследованиях и в любое время для срочных случаев диагностики (неотложные состояния). Не допустим забор крови для плановых биохимических исследований  накануне вечером.

Исключение приема алкоголя должно быть не менее, чем за 24 ч до взятия биоматериала.

Лекарственные средства существенно влияют на результаты лабораторных исследований различным образом. Поэтому при подготовке обследуемых к проведению лабораторных исследований приняты следующие подходы:

  • лекарственные средства, мешающие определению компонентов, исключаются до взятия биоматериала, если они даются не по жизненным показаниям;
  • утренний прием лекарственных средств проводится только после взятия биоматериала;
  • взятие крови с диагностической целью проводится перед проведением инфузии лекарственных средств и растворов.

Взятие биоматериала осуществляется до проведения диагностических или лечебных процедур: операций, инфузий, переливаний крови, растворов, пункций, инъекций, биопсий, общего массажа тела, эндоскопии, физических нагрузок, выполнения ЭКГ, рентгеновского обследования.

Во время проведения глюкозотолерантного теста (тест с нагрузкой глюкозой) не должно проводится никаких других манипуляций, в том числе диагностических.

Значительная физическая и мышечная нагрузка должны быть исключены как минимум за 3 дня до взятия биоматериала.

Для исключения влияния изменения положения тела обследуемый должен находиться в покое, сидеть или лежать не менее 5 мин в связи с изменением концентрации ряда компонентов при переходе пациента из горизонтального в вертикальное положение. Особенно это важно при исследовании показателей кислотно-основного равновесия и активности ферментов. Предпочтительно, за исключением тяжело больных, кровь у пациентов должна забираться в положении сидя.

При динамическом наблюдении за пациентом взятие материала нужно проводить в идентичном положении тела.

Психические нагрузки, стрессы значительно изменяют биохимические показатели и через выброс гормонов изменяют концентрацию других компонентов. Поэтому при взятии биологической жидкости следует создать спокойную, доброжелательную обстановку.

Для обследования на отдельные показатели нужна особая подготовка пациента: для определения уровня мочевой кислоты – нужна безпуриновая диета: исключаются мясо, рыба, красное вино, яйца, сыр, печень на протяжении 3 дней.

Определение уровня сывороточного железа -  сдавать кровь до применения препаратов железа или через 10 дней после отмены препарата. Кровь для исследования сывороточного железа приносить в пластиковых пробирках, которые предварительно нужно брать в биохимическом отделе КДЛ.

Для определения скрытой крови в кале исключить из рациона пациента за 3 дня до обследования мясные продукты и препараты железа.

2. Техника получения биоматериала для клинических лабораторных исследований

Кровь

Первичным биоматериалом для большинства лабораторных исследований  является кровь:

  1. нативная венозная кровь, взятая из крупных вен (чаще из локтевой) без применения антикоагулянтов;
  2. венозная кровь с добавлением антикоагулянтов;
  3. капиллярная кровь из пальца для определения глюкозы, общего анализа крови (ОАК) и других компонентов;
  4. артериальная кровь, взятая из крупных артерий (чаще бедренной или подключичной) - для определения показателей кислотно-основного равновесия.

Венозная кровь

Использование венозной крови для биохимических исследований наиболее предпочтительно.

Взятие венозной крови осуществляет процедурная медсестра. Продолжительность пережатия сосудов жгутом или манжетой не более 1 мин. Пациенту не следует сжимать и разжимать пальцы рук, поскольку это вызывает местный стаз и гипоксию и, как следствие, сдвиги в распределении биохимических показателей.

В зависимости от того, какой материал необходимо получить (сыворотку или плазму),  кровь собирают в чистые сухие центрифужные пробирки без добавок (для получения сыворотки), либо с добавлением антикоагулянтов (для получения плазмы).

Капиллярная кровь

Капиллярная кровь чаще всего используется для определения глюкозы или ОАК.

Забор капиллярной крови осуществляется лаборантом. К приходу лаборанта в отделении должно быть организовано место для забора крови: стол и стулья для лаборанта и пациента. Медсестра должна пригласить всех пациентов, кому назначено проведение лабораторных исследований, для взятия крови.

Получение капиллярной крови

Выполняет лаборант

Положение обследуемого — сидя или лежа. Кровь получают путём прокола 4-го пальца левой руки пациента слева от срединной линии на некотором расстоянии от ногтя. Палец следует держать таким образом, чтобы скопление крови на конце пальца осуществлялось в силу тяжести крови.

Лаборант тщательно дезинфицирует поверхность кожи в месте прокола тампоном с 70% спиртом. После высыхания кожи (алкоголь испаряется с поверхности кожи в течение нескольких секунд), что необходимо для исключения гемолиза, кожа быстро прокалывается скарификатором. Первую каплю крови удалить. Следующие капли крови используются для исследования. Кровь должна вытекать свободно. Массирование пальца для стимуляции тока крови, сильное сжатие и выдавливание крови должны, быть исключены, так как это вызывает выход поврежденных кусочков тканей, клеток крови и тканевой жидкости, что может привести к искажению результатов исследования.

Сыворотка

Сыворотку получают из спонтанно свернувшейся цельной крови путем центрифугирования. Она не содержит факторов свертывания крови.

Плазма

Плазма получается из крови путем отделения клеток крови. В противоположность сыворотке она содержит факторы свертывания крови, т. е. является  бесклеточной надосадочной жидкостью, получаемой при центрифугировании крови, свертываемость которой ингибирована добавлением антикоагулянтов.

Кровь на коагулограмму набирается в пробирку с 3,8 % цитратом натрия. Соотношение цитрата натрия и крови строго 1 к 9: 1 мл цитрата и 9 мл крови или 0,5 мл цитрата и 4,5 мл крови. Уменьшение количества антикоагулянта может спровоцировать свёртывание крови и невозможность исследования плазмы. Большее количество антикоагулянта может вызвать удлинение всех показателей. Пробирки с цитратом натрия нужно получить в биохимическом отделе КДЛ строго накануне исследования. Длительно стоящий цитрат натрия теряют свою активность. Пробирки с цитратом натрия не должны подвергаться воздействию прямых солнечных лучей.

При прокалывании сосуда иглой тканевый тромбопластин попадает с током крови в пробирку, поэтому первые 1,5-2 мл крови не годятся для проведения коагуологических тестов, но могут быть использованы для биохимических исследований. Чтобы исключить влияние на коагуляцию венозного застоя крови, в процессе ее взятия нужно расслабить жгут на несколько секунд.

Венозную кровь, полученную с цитратом натрия (или другим антикоагулянтом) немедленно после взятия  осторожно перемешивают до 5 раз переворачиванием пробирок. Перемешивание должно осуществляться без встряхивания и пенообразования, что вызывает гемолиз эритроцитов. Время между началом наложения жгута и смешиванием крови с антикоагулянтом не должно превышать 2 мин.

Свернувшаяся и гемолизированая пробы не подлежат исследованию.

Моча

Особенность преаналитического этапа для количественного определения компонентов мочи заключается в том, что, как правило, — это моча, собранная за определенный, четко обозначенный промежуток времени. При сборе мочи на анализ по Зимницкому первая порция мочи в 6 часов утра не учитывается, затем собираются 8 порций в течение 24 часов (с интервалом через три часа) и все единовременно доставляются в лабораторию.

Для общего анализа мочи собирается вся утренняя порция мочи.  Моча для анализа мочи по Нечипоренко – только на другой день. Трёхстаканная проба – тоже в отдельный день. Все анализы мочи нельзя сдавать во время менструации у женщин.

3. Условия взятия материала для клинических лабораторных исследований

Взятие биологического материала для лабораторных исследований должно осуществляться с соблюдением правил асептики и антисептики и санитарно-эпидемиологического режима в соответствии с действующими нормативными документами МЗ РБ.

Уменьшение погрешностей на преаналитическом этапе может быть достигнуто путем стандартизации условий взятия биоматериала. Для крови они могут быть обобщены следующим образом:

  • время взятия с 7 до 9 ч утра;
  • взятие проводится, когда обследуемый не принимал пищу 8-12 ч, т. е. натощак;
  • исключить физическую активность и нагрузки за 3 дня до исследования;
  • исключить прием алкоголя;
  • исключить прием лекарственных средств, если они даются не по жизненным показаниям и могут оказать влияние на результаты.
  • за 5 мин до взятия обследуемый находится в покое (сидит или лежит);
  • время наложения жгута не превышает 1 мин;
  • пациент не должен сжимать и разжимать пальцы руки;
  • не похлопывать ладонью по месту взятия с целью увеличения притока крови к нему;
  • соблюдать определенные места для взятия крови, соблюдать методику взятия.

Если необходимо взять кровь для нескольких видов лабораторных исследований, то порядок взятия крови для них должен быть следующим:

  1. Кровь для микробиологических исследований.
  2. Нативная кровь, без антикоагулянтов и других добавок для получения сыворотки (для большинства компонентов биохимических исследований).
  3. Цитратная кровь (для коагуологических исследований).

Основное правило: кровь, которая берется без антикоагулянтов, должна быть взята до крови с антикоагулянтами во избежание загрязнений ими.

Для предотвращения гемолиза крови следует учитывать следующее:

  • соразмерное сдавление вен при наложении жгута, время наложения жгута – не более 1 минуты;
  • взятие крови из вен острыми иглами с коротким срезом, достаточно большого диаметра;
  • перенесение крови из шприца в пробирку осуществляется сразу после взятия, не допуская вспенивания. При этом необходимо снять иглу со шприца.
  • взятие крови осуществляется в химически чистые сухие пробирки  (без примесей детергентов, моющих средств, воды);
  • исключить: сильное нагревание или переохлаждение, задержку транспортировки в лабораторию.

Взятие крови следует проводить до инфузионной терапии. Если это невозможно, то взятие проводится из вен другой руки; если это невозможно, то из вены, в которую проводится вливание, но ниже места вливания. Взятие крови после инфузионной терапии следует осуществлять не ранее, чем через 1 час.

При взятии крови через катетер, находящийся в сосуде, канюлю промывают объемом физиологического раствора, соразмерным с объемом катетера. При взятии не рекомендуется использовать первые 5 мл крови.

Количество собираемой крови зависит от количества назначенных анализов и требуемых для них объемов биоматериала. При этом следует учитывать, что при получении сыворотки её объём составляет около 1/3 взятого объёма крови. Рекомендуется получение количества крови, в 2 раза превышающее необходимое для анализа (минимально). Для биохимии хотя бы 6 мл, для коагулограммы – 4,5 мл.

 

  1. 4. Оформление направлений

 

При взятии материала следует правильно заполнить направление. Пробирки и сопровождающие их документы, этикетки не должны быть перепутаны. На пробирке указывается отделение и порядковый номер. На пробирке с кровью для определения групповой и резус-принадлежности – дополнительно фамилия пациента.

В направлении на анализ при взятии биоматериала необходимо указать: (все данные с учетом приказа МЗ РБ от 28.09.2007 № 787 по формам первичной медицинской документации)

  • данные пациента (фамилию, имя, отчество, дату рождения, пол, адрес места жительства, номер истории болезни, диагноз);
  • фамилию врача, направившего биоматериал на анализ;
  • дату и время взятия биоматериала;
  • дать краткую характеристику направляемого биоматериала (указать вид биоматериала), материал, не соответствующий заявленному, исследоваться не будет – например слюна вместо мокроты, сыворотка вместо плазмы;
  • особенности взятия биоматериала (место взятия - для крови, для мочи - объем, порция, время сбора);
  • все необходимые исследования, а не просто «биохимический анализ крови».

Направление на анализ подписывается врачом.

Избегать дублирования анализов.

Режимы выполнения лабораторных исследований

Вся кровь должна поступать только в центрифужных, химически чистых пробирках, взятых в лаборатории. Кровь для исследования в режиме неотложного анализа должна быть доставлена отдельно, не ставиться вместе с плановыми анализами на стол без предупреждения. Сотрудник отделения, доставивший срочный анализ, должен убедиться, что анализ принят сотрудником лаборатории.

Неотложные анализы (cito!) выполняются в течение 2 часов, только для пациентов в тяжелом состоянии, при необходимости экстренного вмешательства. Для выполнения неотложного анализа выделяется отдельный лаборант и врач лабораторной диагностики. Выполнение исследований в режиме неотложного анализа требует большего расхода реактивов и рабочего времени специалистов, и как следствие больших финансовых затрат.

В настоящее время лаборатория неотложного анализа УГОТКБ в неотложном режиме выполняет следующие исследования:

Общеклинические исследования

  1. Исследование крови:
  • Определение концентрации гемоглобина
  • Подсчет гематокрита
  • Подсчет количества эритроцитов
  • Подсчет количества лейкоцитов
  • Подсчет лейкоцитарной формулы
  • Подсчет количества тромбоцитов
  1. Общеклиническое исследование мочи.
  2. Исследование биологического материала на скрытую кровь.

Биохимические исследования

  1. Кислотно-основное состояние и исследование газов крови.
  2. Калий в сыворотке.
  3. Натрий в сыворотке.
  4. Кальций в сыворотке.
  5. Хлориды в сыворотке.
  6. Хлориды в спинномозговой жидкости.
  7. Общий белок в сыворотке.
  8. Альбумин в сыворотке.
  9. Мочевина в сыворотке.

10.  Креатинин в сыворотке.

11.  Общий билирубин в сыворотке.

12.  Прямой билирубин в сыворотке.

13.  Глюкоза в сыворотке.

14.  Глюкоза в спинномозговой жидкости.

15.  Глюкоза в моче.

16.  ACT в сыворотке.

17.  АЛТ в сыворотке.

18.  Общая креатинкиназа  в сыворотке.

19.  Креатинкиназа МВ-фракция в сыворотке.

20.  ЛДГ в сыворотке.

21.  Тропонин I (качественно) в сыворотке и цельной крови.

22.  Альфа-амилаза в сыворотке и моче.

23.  Кетоновые тела в моче.

Исследование системы гемостаза

Активированное частичное тромбопластиновое время (АЧТВ).

Протромбиновый индекс.

Фибриноген.

Изосерологические исследования

  1. Определение группы крови.
  2. Определение резус-фактора.

Дежурный анализ выполняется в течение рабочего дня – для вновь поступивших пациентов или при ухудшении состояния пациента, не требующего экстренного вмешательства.

Примечание: Нормальные значения лабораторных параметров касаются материала, набранного натощак. Поэтому интерпретация результатов неотложного и дежурного исследования не может заключаться в простом сравнении с нормальными величинами.

Плановые исследования – это все исследования, назначенные накануне, и материала для которых поступает в лабораторию  с 7 до 9 часов утра. Время выполнения  - до 6 часов, в отдельных случаях требуется более длительная аналитическая процедура.

Лабораторное обследование сотрудников УГОТКБ осуществляется по направлению врача, отвечающего за диспансеризацию сотрудников. Во всех остальных случаях предусмотрено обследование на платной основе.

Условия хранения и транспортировки материала для клинических лабораторных исследований

С целью профилактики профессионального инфицирования любую биологическую жидкость необходимо рассматривать как потенциально инфицированный материал, соблюдая все соответствующие правила обращения с ней при транспортировке, хранении и обработке. Биоматериалы от инфекционных пациентов должны иметь особую маркировку, обращаться с ними надо с особой осторожностью. Все биоматериалы от пациентов с ВИЧ-инфекцией должны помечаться на направлении «код 120» с обязательным указанием номера истории болезни.

Полученная биологическая жидкость должна быть доставлена в лабораторию как можно быстрее. При необходимости определения глюкозы и показателей кислотно-основного состояния кровь должна быть доставлена в лабораторию немедленно.

На всех этапах транспортировки и обработки кровь должна находиться в пробирках, закрытых крышками, для предотвращения испарения и загрязнения микробами и различными веществами извне.

Пробирки при доставке должны располагаться вертикально, кверху крышками, что способствует сохранности проб и ускорению образования сгустка при получении сыворотки, уменьшает встряхивание при транспортировке и опасность возникновения гемолиза.

Пробирки не следует заполнять до краев. Цельную кровь, полученную без антикоагулянтов, не следует помещать в холодильник до доставки в лабораторию во избежание гемолиза.

Центрифугирование производится не позднее, чем через 1 ч после взятия биоматериала.

Оценка биоматериала для исследования

Гемолиз. Гемолизированная сыворотка и плазма непригодны для анализа многих компонентов (железа, ЛДГ, АЛТ, АСТ, калия,  креатинина, билирубина и др.) в силу различных причин (более высокого содержания компонентов в эритроцитах и перехода веществ из них в сыворотку/плазму при гемолизе).

При появлении признаков гемолиза запрашивается свежая кровь для анализа. Причины гемолиза на преаналитическом этапе рассматривались ранее.

Липемия. При липемии происходит помутнение сыворотки или плазмы вследствие высокого содержания хиломикронов после приема пищи, богатой жирами или вследствие нарушений липидного обмена. Липемическая сыворотка и плазма не пригодны для исследования. В данном случае взятие крови должно осуществляться после голодания пациента в течение 24 часов.

Мутность материала для исследования может быть обусловлена ростом бактерий, попавших в пробу, особенно при длительной транспортировке и неправильном хранении. В этих случаях материал также не пригоден для анализа.

Помимо указанных, критериями неприемлемости биоматериала для анализа в лаборатории являются:

  • отсутствие маркировки на пробирках, перепутывание направлений на анализ;
  • несоответствие биоматериала заявленному в направлении;
  • несоответствие объема собранной крови количеству добавленного антикоагулянта;
  • неправильное хранение биоматериала;
  • неправильная и несвоевременная транспортировка биоматериала.

 

Первичная обработка биоматериала в лаборатории.

Распределение и хранение биоматериала в лаборатории.

 

 

Получение сыворотки

Выполняет лаборант.

Венозная кровь, полученная без антикоагулянтов в центрифужную стеклянную пробирку, отстаивается в ней при комнатной температуре (15—25°С) в течение 30 мин до полного образования сгустка. По окончании образования сгустка пробирки открывают и осторожно проводят тонкой металлической палочкой или тонкой стеклянной пипеткой по внутренним стенкам пробирки по окружности в верхнем слое крови для отделения столбика сгустка от стенок пробирки.

После ретракции сгустка пробы центрифугируют при скорости  1500 об./мин в течение 10-15 мин, а затем отделяют (отбирают с помощью пипетки) сыворотку от сгустка.

При проведении всех этапов пробирки закрываются крышками.

Получение плазмы

Выполняет лаборант.

Венозную кровь, полученную с цитратом натрия после уравновешивания пробирок с кровью, их центрифугируют при скорости 3000 об./мин, в течение 15 мин. Плазму немедленно сливают в другую пробирку. Пробирку закрывают крышкой.

Плазму отделить от эритроцитов, а сыворотку от сгустка нужно не позже, чем через 1 ч после взятия крови, иначе результаты исследования будут искажены за счёт выхода ряда веществ из эритроцитов. Сыворотку и плазму используют для проведения лабораторных исследований непосредственно после приготовления. При необходимости сыворотку хранят в холодильнике при 2-60 С. Если выполнение анализа задерживается, то допускается хранение сыворотки или плазмы в течение 3 месяцев при условии замораживания сразу после получения и однократным замораживанием сразу перед исследованием.

Другие виды биоматериалов в клинико-диагностической лаборатории не хранятся.

Особенности подготовки биологического материала к выполнению отдельных видов лабораторного исследования см. Приложение 1.

Преаналитический этап микробиологических исследований

  1. 1. Забор отдельных видов материала для микробиологического  исследования

Исследование крови

Исследование на гемокультуру следует проводить при заболеваниях, характерной особенностью которых является лихорадка.

Исследование целесообразно проводить до начала антибиотикотерапии. Контрольное исследование осуществляется через 12-24 часа после отмены последнего препарата.

Кровь берут во время подъёма температуры из периферической  вены  с соблюдением правил асептики и мер индивидуальной защиты, предусмотренных при работе с кровью.

Не следует брать кровь из сосудистых катетеров, кроме случаев, когда предполагается инфекция  катетерного происхождения.

Забор крови проводят в процедурном кабинете или у постели пациента (у пациентов с тяжелым состоянием).

Объем исследуемой крови для взрослого – 10 мл, для ребенка – 5 мл.

Тут же проводят посев на питательные среды.

Посев материала
(во флаконы, приготовленные в лаборатории)

Процедуру проводить с участием лаборанта бактериологической лаборатории, чтобы правильно осуществить посев (открытие флакона, обжиг горлышка и т.д)

Проводят два человека.

В то время как один обрабатывает кожу пациента, пунктирует вену и берёт кровь, другой - над пламенем спиртовки открывает пробки флаконов, подставляет флаконы со средой под струю крови из шприца или системы, обжигает горлышки и пробки флаконов и закрывает их.

Соотношение крови и питательной среды должно быть 1:10 и, по-возможности, максимально большим (до 10 мл у взрослых и 5 мл для детей).

Посев материала
(при использовании коммерческих флаконов)

Посев производится медсестрой отделения без участия сотрудника лаборатории согласно прилагаемой инструкции: дезинфицируют резиновую пробку флакона 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком), выдерживают  1 минуту, производят посев крови во флакон, предварительно сменив иглу шприца.

Флаконы маркируют с указанием фамилии, имени, отчества пациента, даты и  времени отбора пробы, и до момента доставки в лабораторию содержат в термостате или при комнатной температуре в защищённом от света месте (не в холодильнике).

Однократное исследование крови мало результативно, следует стремиться к проведению серии из 3 и более исследований за определенный промежуток времени.

Кратность забора крови при бактериемии и сепсисе:

  • на высоте лихорадки, когда необходимо срочно начать прием или сменить АБ: в течение 10 минут отбирают 2 пробы из разных вен;
  • в случае, когда не требуется срочно начинать антибиотикотерапию или менять АБ: 2-3 образца крови из разных вен с интервалом не менее 3 ч  в течение 24 часов ( до приема АБ).

 

Исследование мочи

Материал для исследования берут до начала антибактериальной терапии или в интервалах между курсами лечения. Исследованию подлежит средняя порция свободно выпущенной мочи, взятой в стерильную посуду в количестве не менее 3-5 мл. Предпочтительно отбирать утренние порции мочи. Перед мочеиспусканием пациент должен тщательно вымыть руки и провести туалет наружных половых органов теплой водой с мылом. После мочеиспускания банку необходимо закрыть, не касаясь внутренней поверхности крышки. Материал нужно сразу доставить в лабораторию. Если это невозможно, нужно поместить банку с мочой в холодильник.

Сбор суточной мочи для бактериологического исследования не практикуется.

Исследование материала из верхних дыхательных путей (зева, носоглотки, глотки, гортани, носа)

Материал следует брать до еды или через 2 - 3 часа  после приёма пищи

Прижимая язык шпателем, вводят стерильный тампон между дужками миндалин и язычком, ротационным движением собирают материал с задней поверхности глотки, миндалин и участков воспаления или изъязвления слизистой. При этом следует избегать прикосновений с неизмененной слизистой оболочкой, мягким небом, языком,  избегать контакта со слюной.

Тампон помещают в стерильную пробирку, при необходимости используя транспортную среду.

Для диагностики менингококковой инфекции забирают слизь с задней стенки глотки натощак или через 3-4 часа после еды стерильным ватным тампоном, который заводят за мягкое нёбо и 2-3 раза проводят по задней стенке носоглотки. Тампон не должен касаться зубов, слизистой щёк, языка.

Мазок со слизистой передних отделов полости носа

Материал из носовых ходов забирают с помощью сухого стерильного тампона.

Микробиологический тампон поочередно вводят в обе ноздри и вращательными движениями собирают материал со слизистой. Тампоны помещают в стерильную пробирку.

Для приготовления мазка из носа для исследования на эозинофилы материал, набранный стерильным ватным сухим тампоном в достаточном количестве, сразу же наносится на предметное стекло.

Биологический материал доставляют в лабораторию в максимально короткие сроки,  но не позднее 1,5-2 ч после его получения.

 

Исследование мокроты

 

Обязательное условие для проведения бактериологического исследования мокроты на неспецифическую микрофлору – сбор материала до начала антибиотикотерапии. Сбор материала для исследования на специфическую микрофлору (туберкулёз) – необходимо по возможности также проводить до начала химиотерапии, так как специфическая терапия в течение даже нескольких дней может привести к гибели значительного количества микобактерий или снизить их жизнеспособность и исказить результаты исследования.

Методика сбора мокроты.

Собирают мокроту до приёма пищи и приема лекарственных средств.

Перед взятием материала пациент должен почистить зубы и прополоскать рот кипячёной водой с целью удаления остатков пищи, слущенного эпителия и микрофлоры.

Пациент должен сделать 2 глубоких вдоха, задержать дыхание на несколько секунд после каждого вдоха и затем медленно выдохнуть. Затем попросите пациента вдохнуть третий раз и с силой выдохнуть воздух. Потом попросите вдохнуть ещё раз и затем покашлять. Это способствует получению мокроты из глубоких отделов лёгких. После появления продуктивного кашля пациент должен поднести к губам контейнер и аккуратно сплюнуть в него мокроту.

Качественным материалом можно считать мокроту, имеющую слизистый или слизисто-гнойный характер, а также содержащую плотные белесоватые включения. Желтоватый, серый или бурый цвет мокроты позволяет предположить диагностическую ценность материала.

Минимально достаточный объем исследуемой порции мокроты составляет 3 - 5 мл.

Материал для исследования должен быть доставлен в лабораторию сразу же после его сбора. Если транспортировка откладывается, то собранный материал следует обязательно хранить в холодильнике, чтобы предупредить рост контаминирующей микрофлоры.

Индуцированная мокрота. Если пациент не может собрать мокроту, для получения материала используют метод раздражающих ингаляций.

Для аэрозольных ингаляций пользуются портативными или стационарными аэрозольными ингаляторами. Для ингаляций рекомендуется раствор, в 1 л которого содержится 150 г хлорида натрия (NaCl) и 10 г двууглекислого натрия (Na2CO3). Для приготовления раствора используется стерильная дистиллированная вода. Для провокации мокроты необходимо вдохнуть на протяжении 10–15 минут от 30 до 60 мл подогретой до 42–45°С смеси. В связи с тем, что аэрозольная ингаляция вызывает выделение водянистого секрета, напоминающего по консистенции слюну, во избежание выбраковки материала в бланке направления и на флаконе с материалом должна быть обязательная маркировка, указывающая на то, что материал получен после аэрозольной ингаляции.

У большинства пациентов после аэрозольной ингаляции в течение нескольких часов наблюдается остаточная гиперсекреция бронхиального отделяемого, поэтому пациенту рекомендуется в течение суток после ингаляции собрать мокроту для второго исследования.

При отсутствии мокроты, невозможности проведения аэрозольной ингаляции или безуспешности этой процедуры для исследования на микобактерии берут промывные воды бронхов.

Промывные воды бронхов. Сбор промывных вод бронхов производится врачом. Промывные воды бронхов собирают через сифон в стерильный флакон и немедленно направляют в лабораторию.

 

Правила сбора диагностического материала для исследования на ВАСТЕС

 

Материал для исследования на микобактерии туберкулеза с помощью автоматизированных систем собирают утром после туалета полости рта в специальные стерильные одноразовые флаконы с герметично завинчивающимися или закрывающимися крышками. Оптимальный объём пробы 5-7 мл. Из-за высокой стоимости исследования замена мокроты слюной не допустима!

Собранный материал необходимо немедленно доставить в лабораторию в специальном контейнере. При транспортировке материала необходим тщательный контроль за целостностью флаконов и правильностью их маркировки.

Материал с кровью не пригоден для исследования.

В направлении обязательно заполнять все графы (включая сведения о полученном лечении). Заполнять отрывной талон бактериоскопии.

 

Исследование асептически собранного материала (ликвор, биоптаты, пунктаты, операционный материал)

Люмбальная пункция и взятие ликвора проводится врачом с соблюдением всех правил асептики. Порции ликвора берут в отдельные пробирки для проведения общего ликворологического исследования (в клинической лаборатории), для биохимического исследования (в биохимической лаборатории), для бактериологического исследования – в стерильную пробирку из бактериологической лаборатории. Образцы должны быть немедленно доставлены в лабораторию. Во время транспортировки ликвор необходимо оберегать от охлаждения. В отделении ликвор может хранится в течении нескольких часов только при наличии термостата.

Другой асептически собранный материал помещают в стерильный флакон без консервантов и немедленно доставляют в лабораторию. Если материал не может быть немедленно доставлен в лабораторию, во избежание высыхания к нему добавляют небольшое количество стерильного изотонического раствора и помещают в холодильник при 4-10°С.

 

Исследование отделяемого инфицированных ран

Взятие материала производится во время операции или перевязки.

При наличии абсцессов, ран, фистул, гангрены  или некроза тканей, кожу вокруг раневой поверхности обрабатывают антисептиком, некротические массы, детрит, гной удаляют стерильной сухой салфеткой и отбирают отделяемое из основания очага поражения используя стерильный контейнер, шприц или пробирку.

При отборе проб с помощью микробиологического тампона, используют два тампона (один используют для посева, второй – для бактериоскопии). Кожу вокруг раны обрабатывают антисептиком, удаляют с помощью стерильной салфетки некротические массы, гной, детрит. Материал отбирают из глубины пораженного участка, осуществляя стерильным тампоном круговые вращательные движения от центра раны к периферии и помещают в стерильную пробирку (при необходимости с  транспортной средой).

Материал, отобранный с помощью микробиологического тампона, храниться при комнатной температуре и доставляется на исследование не позднее 2-х часов.  Материал, собранный  в стерильный контейнер, должен быть доставлен в лабораторию в течение 2 часов.

Материал, полученный при оперативном вмешательстве (биоптаты мягких тканей) помещают в стерильный контейнер со стерильным  физиологическим раствором.

При подозрении на анаэробную инфекцию (специфический неприятный запах раневого отделяемого, наличие пузырьков газа в тканях и отделяемом ран, окрашивание экссудатов в черный цвет, некротизация очага воспаления)  транспортировка биоматериала в лабораторию должна осуществляться в одноразовых шприцах, заполненных без попадания в них воздуха. Возможен забор участка мягких тканей (мышцы) из глубины раны. При подозрении на анаэробную флору доставка материала в лабораторию и посев материала производят немедленно.

Исследование отделяемого женских половых органов

 

Взятие материала для микробиологических исследований проводит акушер-гинеколог или акушерка. Накануне исследования должны быть исключены половые контакты, влагалищные спринцевания и введение лекарственных форм. Материал для бактериологического и микроскопического исследования забирают одновременно. Из материала предназначенного для микроскопии сразу готовят мазки на предметных стеклах. Мазки высушивают и направляют в лабораторию.

Влагалище. После введения зеркала и подъемника материал для исследования берут стерильным ватным тампоном из заднего свода или с патологически измененных участков слизистой оболочки. Тампон помешают в стерильную пробирку.

Материал для посева должен быть взят до мануального исследования

Шейка матки. После обнажения шейки матки в зеркалах, влагалищную часть ее  обрабатывают   тампоном. После этого другим тонким ватным тампоном, осторожно введенным в цервикальный    канал,    не   касаясь   стенок   влагалища,   берут   материал   для исследования

 

Исследование менструальной крови.

Исследование менструальной крови требует особого методического подхода. Наличие в этом материале большого количества протеолитических, фибринолитических и других ферментов обусловливает необходимость незамедлительной доставки материала в лабораторию и тщательной его обработки. Менструальная кровь, с одной стороны, является весьма подходящим материалом для развития контаминирующей флоры, а с другой, обилие ферментов неблагоприятно влияет на жизнеспособность микобактерий. Менструальную кровь следует собрать в стерильную посуду и немедленно доставить в лабораторию. Исследуют ее так же, как кровь или другие материалы с примесью крови.

Исследование отделяемого мужских половых органов

Взятие материала производит врач-уролог.

Соскоб из мочеиспускательного канала. Материал забирают специальным зондом и сразу готовят мазки на предметных стёклах. В лабораторию должно быть направлено как минимум 2 мазка от одного пациента. Соскоб берут из ладьевидной ямки посредством вращения в ней зонда по спирали в течение 10–12 с. Соскоб из мочеиспускательного канала следует брать не ранее, чем через 1 ч (идеально — через 4 ч) после мочеиспускания. При скудном отделяемом пациенту предлагают не мочиться в течение 4-8 часов, а затем массируют уретру, стараясь выдавить собравшийся в глубине секрет.

Для бактериологического исследования материал забирают зондом, тампоном, бактериологической петлёй в стерильную посуду и немедленно доставляют в лабораторию.

Эякулят. Материал для исследования обычно собирают посредством мастурбации. Перед сдачей эякулята пациенту необходимо воздержаться от половых контактов, приёма алкоголя и горячих ванн в течение 3–4 дней. Оптимально провести исследование в течение часа с момента получения эякулята, поскольку при длительном стоянии изменяются физико-химические свойства пробы, что влияет на активность сперматозоидов и, соответственно, на результаты анализа.

Секрет простаты. Для получения секрета простаты в течение 1 мин последовательно выполняют массаж правой, а затем левой доли железы от периферии к центру. Выделяющуюся из мочеиспускательного канала белесовато-жёлтую жидкость собирают на предметное стекло или в пробирку и доставляют в лабораторию.

Исследование отделяемого глаз

Взятие материала осуществляется врачом-офтальмологом, не ранее чем через 5-6 часов после местного приёма медикаментов и процедур. С коньюнктивы материал берут стерильным ватным тампоном (при обильном гнойном отделяемом). Веки необходимо придерживать руками. Материал берут 2-3 движениями по слизистой нижней переходной складки. При отсутствии гноя и слизи вносят под нижнее веко 1 каплю стерильного изотонического раствора.

Из слёзного мешка отделяемое получают путём выдавливания.

Материал с роговицы берут петлёй или другим инструментом после обезболивания.

Исследование отделяемого ушей

Взятие материала для микробиологического исследования проводит врач-отоларинголог. При поражении среднего и внутреннего уха исследуют пунктаты и материал, полученный во время оперативных вмешательств, собранный в стерильную посуду. Отделяемое берут стерильным ватным тампоном. Наиболее достоверные результаты исследования получают при пункции среднего уха через непрорвавшуюся барабанную перепонку.

При поражении наружного уха следует обработать кожу прилегающих областей раствором антисептика, чтобы при взятии материала не было контаминации тампона сапрофитной микрофлорой. Тампон с материалом помещают в стерильную пробирку и доставляют в лабораторию.

Исследование фекалий

 

 

Бактериологическое исследование кала производят редко, так как обычно положительный результат получить не удается.

Собирают из тщательно вымытых и лишенных следов дезинфицирующих средств судна или  горшка сразу после дефекации.

Пробы берут стерильной стеклянной палочкой или проволочной петлей.

При наличии в испражнениях патологических примесей (слизь, кровь, хлопья. гной) их следует включать в отбираемую пробу.

Порцию фекалий помещают:

на дисбактериоз – в стерильный флакон (массой 5-10гр).

на дизгруппу и флору – в пробирку с консервантом и тщательно перемешивают. Объем испражнений должен составлять 1/3  объема консерванта.

Для исключения воздействия дезрастворов испражнения рекомендуется получать стерильным ректальным тампоном, ватным или ватномарлевым, укрепленным на металлической петле или деревянной палочке, смоченным стерильным физраствором, непосредственно из прямой кишки. Получение материала осуществляется средним медицинским персоналом. Больного просят лечь на бок с притянутыми к животу бедрами и ладонями развести ягодицы.  Тампон вводят на глубину не менее 5-6 см.

2. Транспортировка биологического материала в лабораторию для бактериологического исследования

 

Во время транспортировки диагностический материал должен предохраняться от воздействия прямых солнечных лучей и тепла. Если транспортировка занимает более 24 часов необходимо использовать консерванты.

Единым требованием к упаковке инфекционного материала для транспортировки является то, что он должен быть надежно упакован для предупреждения его вытекания из контейнера при ударах, повышении давления и в других ситуациях.

Во избежание протечки жидких материалов и нарушения целости флаконов они должны быть закреплены в транспортировочных контейнерах или биксах в вертикальном положении и снабжены прокладками, предохраняющими их от повреждения. Прокладки должны быть выполнены из материалов, обладающих высокой адсорбционной способностью с тем, чтобы в случае протечки они могли адсорбировать жидкость и ограничить участок загрязнения в пределах транспортировочного контейнера.

Мазки для микроскопического исследования транспортируются в специальных планшетах или чашках Петри. Для предохранения от перекрестной контаминации они не должны соприкасаться друг с другом.

Важно: весь биоматериал,    собираемый для бактериологического обследования (посевов) на туберкулёз должен собираться в стерильные конические пробирки объёмом 50 мл с завинчивающимися крышками.

Важно: из одной порции собранной в виде биоматериала (например, мокроты  в количестве 5-10 мл), могут быть проведены все бактериологические исследования: на неспецифическую микрофлору, бактериоскопия на КУМ, люминисцентная микроскопия, ВАСТЕС,  посев на плотные среды, на грибы. Если же материал сдаётся в виде мазков – для каждого вида исследования необходим отдельный мазок.

Бланки направления на бактериологическое исследование поступают в лабораторию вместе с каждой пробой, присланной на анализ. Данные о пациенте должны быть полными, т.е. заполняются все графы бланка с обязательным указанием вида исследования, например, бактериоскопия мокроты, культуральное исследование и т.д.

Во избежание инфицирования, загрязнения бланков, индивидуальных направлений их нужно помещать в полиэтиленовый пакет. Категорически запрещается заворачивать флакон с материалом в бланк направления на исследование.

На всех этапах сбора, оформления сопроводительных документов, хранения и транспортировки материала сотрудники лаборатории должны проводить инструктаж лиц, непосредственно ответственных за сбор диагностического материала, контролировать его качество, правильность консервации и транспортировки и своевременность доставки в лабораторию.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Литература

 

  1. Приказ МЗ РБ № 106 от 04.07.2002 г. «О совершенствовании диспансерного наблюдения и выявлении больных туберкулёзом в Республике Беларусь»
  2. Приказ № 535 МЗ СССР от 22.04.1985 г. «Унификация микробиологических, бактериологических методов исследований, применяемых в клинико-диагностических лабораториях ЛПУ»
  3. Приказ № 558 МЗ СССР от 28.06.1978 г. «Об унификации микробиологических методов исследования при туберкулёзе»
  4. Инструкция по применению «Алгоритм бактериологической диагностики туберкулёза и определения лекарственной чувствительности микобактерий к препаратам основного и резервного ряда с использованием автоматизированных систем» от 27.04.2007 г. № 045-0506
  5. Лабораторная служба в программах борьбы с туберкулёзом. Часть 2. Бактериоскопия.- ВОЗ, Женева,1998.- 61 с.
  6. Лабораторная служба в программах борьбы с туберкулёзом. Часть 3. Бактериологическая диагностика.- ВОЗ, Женева,1998.- 61 с.
  7. А.Г. Бойцов, В.П. Иванов, О.Н. Ластовка, А.А. Порин Введение в клиническую микробиологию. – СПбГМА им. И.И. Мечникова, 1999. – 114 с.
  8. Аналитические основы лабораторной диагностики: Методические рекомендации/ Киселевский Ю., Колб В., Костин Н., Борец В., Лысяк-Шидловская В. – Гродно, 1996.- 73 с.
  9. Фридецкий Б., Кратохвила И., Горак И.и др. Преаналитический этап лабораторного анализа. – Пардубице, 1999. – 68 с.

10.  Лабораторные методы исследования в клинике: Справочник/Меньшиков В.В., Делекторская Л.Н., Золотницкая Р.П. и др.; Под ред. В.В. Меньшикова.- М.: Медицина, 1987. – 386 с.

11.  Методы клинических лабораторных исследований: учебник/ под ред. В.С. Камышникова. – М.: МЕДпресс-информ, 2009. – 752 с.

12.  Камышников В.С. // Особенности подготовки биологического материала к выполнению отдельных видов лабораторного исследования. // Мир медицины. – 2010. – №3. - С.10-12

13.  Камышников В.С. // Особенности подготовки биологического материала к выполнению отдельных видов лабораторного исследования. // Мир медицины. – 2010. – №4.- С. 10-11

14.  Камышников В.С. // Особенности подготовки биологического материала к выполнению отдельных видов лабораторного исследования. // Мир медицины. – 2010. – № 5. - С.13-14

15.  Камышников В.С. // Особенности подготовки биологического материала к выполнению отдельных видов лабораторного исследования. // Мир медицины. – 2010. – №6. - С. 5-7

 

 

 

 

 

 

 

 

Приложение 1

 

Особенности подготовки биологического материала к выполнению отдельных видов лабораторного исследования

 

Наименование лабораторного теста

Требования к выполнению отдельных видов лабораторного исследования

1

2

Аланинамино-трансфераза (АЛТ), аспартат-аминотрансфераза (АСТ)

При использовании сыворотки исследование должно быть проведено в день взятия крови, поскольку фермент теряет активность в процессе хранения как при комнатной температуре, так и при более низких её значениях: 40 С и -200 С. На величину параметра существенное влияние оказывают возраст, масса тела и прием алкоголя. Перед взятием крови недопустима физическая нагрузка.

Альбумин

Для исследования используется сыворотка (плазма) крови, спинномозговая жидкость и моча. Необходимо использовать свежую порцию сыворотки крови или, в случае выполнения отсроченных исследований, хранить её в течении менее 72 часов при температуре 40 С. Проба стабильна при -200 С до 6 месяцев. Предпочтительно использовать образцы без липемии и/или гемолиза. На величину параметра существенное влияние оказывает положение тела во время взятия крови.

Для выявления микроальбуминурии мочу собирают в течении 24 часов, на анализ отбирают 10 мл из общего её количества. На величину параметра существенное влияние оказывает физическая нагрузка.

Спинномозговую жидкость следует отцентрифугировать и использовать свежей либо хранить перед выполнением анализа менее 72 часов. Проба стабильна при -200 С до 9 месяцев. Образцы не должны содержать примесей крови.

Альфа-амилаза

Активность фермента определяют обычно в сыворотке крови, моче, плевральной жидкости. Образец сыворотки крови стабилен при комнатной температуре до 7 суток, при 40 С до 4 месяцев. Предпочтительно хранить сыворотку при 40 С. На величину параметра существенное влияние оказывает липемия ?.

В моче в основном содержится панкреатическая амилаза. Хранить мочу следует не более 1 часа при 40 С.

Антистрептолизин О

На величину параметра существенное влияние оказывают ?-липопротеины и возраст. Характерна сезонность – титр зимой и весной больше, чем летом.

Антитромбин III

Кровь берут в пробирку, содержащую 3,8% цитрат натрия (в отношении 1 часть цитрата к 9 частям крови). Полученную плазму используют для анализа в течении 3 часов. Плазма стабильна в течении 2 недель при температуре -200 С.

АЧТВ

Кровь берут в пробирку, содержащую 3,8% цитрат натрия (в отношении 1 часть цитрата к 9 частям крови). Полученную плазму используют для анализа в течении 3 часов. Охлаждение инактивирует АЧТВ. На величину параметра влияют гепарин, гемолиз, детергенты, активность коагуляционных факторов, антикоагулянтов.

Белок общий

Исследованию подвергают свежий или хранившийся менее 72 часов при 40 С образец сыворотки крови. Анализируемая проба стабильна до 6 месяцев при -200 С. Желательно использовать сыворотку крови без липемии и следов гемолиза. Во время взятия крови необходимо избегать веностаза. На значение параметра сильное влияние оказывает положение тела, физическая нагрузка ?, беременность ?.

Мочу собирают в течении 24 часов без консервантов, в период сбора держать в холодильнике. На исследование отбирают 20 мл мочи из общего количества. На измерение сильное влияние оказывает примесь эякулята, гемоглобина, физическая нагрузка, беременность ?.

Спинномозговую жидкость или транссудат перед использованием необходимо отцентрифугировать, анализировать свежий образец или хранившийся при 40 С менее 72 часов. Проба стабильна при -200 С до 6 месяцев.

Белковые фракции

При использовании сыворотки следует анализировать свежий образец или хранившийся менее 72 часов при 40 С. Проба стабильна при -200 С до 6 месяцев. Желательно использовать для анализа пробы без следов гемолиза и признаков липемии.

Билирубин (общий, прямой, непрямой)

Пробы биологической жидкости следует защищать от действия света. На величину параметра сильное влияние оказывает гемолиз ? и свет ?.

Гамма-глютамил-транспептидаза (ГГТП)

Активность фермента в пробе сыворотки крови сохраняется неизменной в течении 1 месяца при 40 С или 1 год при -200 С. Взятие крови производят после 8 часового голодания. На величину параметра сильное влияние оказывает холестаз ?, алкоголь ?, беременность, лекарства.

Газы крови (рН, рСО2, рО2, бикарбонаты и др.)

Кровь стабильна в пластмассовых шприцах не более 15 минут при комнатной температуре. На величину параметров существенно влияют избыток гепарина, место и техника взятия крови, лейкоцитоз, тромбоцитоз, контакт с воздухом.

Гематокрит

Кровь берётся с антикоагулянтом. На величину параметра влияет длительность хранения пробы, гипергликемия, гепарин, липемия, возраст, пол, веностаз.

Гемоглобин

На величину параметра влияют длительность хранения пробы, гепарин, липемия, парапротеины, лейкоцитоз, возраст, пол, веностаз.

Глюкоза

Кровь берут у пациента натощак. На величину параметра сильное влияние оказывает диета ?, прием алкоголя ?, гематокрит, температура, место взятия крови.

Спинномозговую жидкость следует исследовать немедленно (во избежание возникновения ложно низких результатов). На измерение сильно влияет бактериальное загрязнение ?. Хранить при -200 С.

Возможно определение в моче. В сопроводительном бланке указывается время сбора и общий объём мочи.

Д-димеры

Кровь берут в пробирку, содержащую 3,8% цитрат натрия (в отношении 1 часть цитрата к 9 частям крови). Полученную плазму используют для анализа в течении 3 часов. Плазма стабильна в течении 1 месяца при температуре -200 С. На величину параметра влияют недостаток антикоагулянта в пробе, ревматоидный фактор, тромбоз, цирроз, хирургическое вмешательство, онкологические заболевания.

Железо

Кровь набирают в пластиковую пробирку и только утром из-за суточных колебаний. Гемолизированные образцы крови использовать нельзя. На величину параметра существенно влияют биоритмы, пол, беременность, возраст, период менструального цикла.

Ig A, Ig G, Ig M, Ig E

Рекомендуется использовать свежий образец сыворотки или хранившийся менее 72 часов при 40 С. Проба стабильна при -200 С до 6 месяцев. Желательно использовать для анализа пробы без следов гемолиза и признаков липемии. Величина параметров значительно зависит от возраста и курения.

Калий

Поскольку эритроциты содержат в большом количестве калий, сыворотка либо плазма крови не должны иметь следов гемолиза (так как это может привести к ложноположительным результатам). По этой причине сыворотку следует отделять от клеточных элементов крови как можно быстрее, не допуская гемолиза! Предпочтительнее использовать плазму. Её также следует как можно скорее отделить от клеток крови. Забор проводить без наложения жгута или с коротким временем наложения.

Кальций

Венозную кровь, используемую для получения сыворотки, следует брать у пациентов натощак, при минимальном пережатии вены, без мышечной нагрузки или после восстановления кровообращения в течении 1 минуты. На величину параметра существенно влияют липемия, беременность ?, гиподинамия ?, веностаз при взятии крови ?.

Кальций ионизированный

Взятие крови следует осуществлять в анаэробных условиях. Проба крови немедленно доставляется в лабораторию на льду.

Креатинкиназа

Креатинкиназа МВ-фракция

Перед взятием крови недопустимы физические нагрузки, хирургические вмешательства, внутримышечные инъекции. Избегать гемолиза. Отделение форменных элементов необходимо провести в первые 30 мин. после взятия. Кардиологическим больным рекомендуется исследование в динамике. На величину параметра существенно влияет гемолиз, свет ?, физическая нагрузка ?.

Лактат

Взятие крови (венозной или артериальной) проводят без использования жгута, т.к. последний может привести к повышению лактата. Транспортировка крови осуществляется при температуре 40 С (на льду или в термоконтейнере). Измерению мешают гемолиз, гипербилирубинемия. На величину параметра существенно влияют физическая нагрузка, место взятия крови.

Лактатдегидрогеназа (ЛДГ)

Избегать гемолиза. Не замораживать. Кардиологическим больным рекомендуется исследовать в динамике. Измерению мешают липемия, гемолиз. На величину параметра существенно влияют физическая нагрузка, веностаз при взятии крови, тромбоцитоз, беременность

Лейкоциты

На величину параметра влияет длительность хранения пробы, возраст, курение ?, физические нагрузки?, циркадные ритмы, инфекции, стресс, место взятия крови.

Лейкоцитарная формула

Фиксированные и окрашенные мазки крови устойчивы. Состав лейкоцитарной формулы зависит от наличия в крови хиломикронов, криоглобулинов, возраста пациента, физической активности, курения, циркадных ритмов, положения тела во время взятия крови.

Мочевая кислота

Измерению мешают иктеричность, гемолиз. На величину параметра существенное влияние  оказывают возраст, приём алкоголя, диета, физическая нагрузка ?, приём контрацептивных препаратов ?, приём лекарств.

Определяется и в суточной моче.

Мочевина

На величину параметра существенное влияние оказывает возраст, протеиновая диета.

Натрий

Для получения сыворотки или плазмы кровь следует центрифугировать как можно скорее после взятия. Избегать гемолиза! Устойчивость крови при комнатной температуре и при 40 С не более часа. На величину параметра существенное влияние оказывают липемия, недостаток жидкости в организме, большое количество инфузий.

С-реактивный белок

Анализируют только в сыворотке, плазма не подходит. Если исследование проводится в течение первых 48 часов после взятия крови, сыворотку хранят в холодильнике, более отдалённое исследование требует заморозки при -200 С. На величину параметра существенное влияние оказывают физические нагрузки, диета, положение тела во время взятия крови, возраст ?, беременность ?, курение ?.

Протромбиновое время (ПТИ, МНО – расчётные показатели)

Кровь берут в пробирку, содержащую 3,8% цитрат натрия (в отношении 1 часть цитрата к 9 частям крови). Полученную плазму используют для анализа в течении 3 часов. Плазма стабильна в течении 1 дня при 40 С. На величину параметра влияет гепарин, гемолиз, неправильное взятие крови, патология печени, витамин К, непрямые антикоагулянты.

Простатспецифический антиген, ПСА (опухолевый маркер)

Биологическим материалом для исследования обычно является сыворотка крови. Для её получения венозную кровь следует немедленно доставить в лабораторию. Образец сыворотки стабилен до 2 недель при 40 С. Для более длительного хранения, его следует содержать в замороженном виде при -200 С. Не допускать повторных циклов охлаждения-оттаивания (!). На величину параметра существенное влияние оказывает езда на велосипеде, ректальное исследование ?, катетеризация ?, возраст, физическая нагрузка, циркадные ритмы.

Растворимые фибрин-мономерные комплексы (РФМК)

Кровь берут в пробирку, содержащую 3,8% цитрат натрия (в отношении 1 часть цитрата к 9 частям крови). Полученную плазму используют для анализа в течении 3 часов. Плазма стабильна в течении 1 дня при 40 С, 1 месяц при температуре -200 С. На величину параметра влияют неправильное взятие крови, ингибиторы гепарина, эклампсия, алкогольный цирроз, опухоли, послеоперационные осложнения, болезни сердца, почек, печени, фибринолиз, эмболия лёгких, тромбоз глубоких вен, ревматоидный фактор.

Ревматоидный фактор

Необходимо быстрое отделение форменных элементов крови. Нельзя использовать плазму.

Ретикулоциты

При подсчёте важно правильно оценить количество эритроцитов в поле зрения. На величину параметра влияет длительность хранения пробы, свет, возраст, нарушение созревания эритроцитов, состояние эритропоэза.

Триглицериды

Взятие крови проводится натощак с предварительным 13-14 часовым голоданием. Однократное определение липидов сыворотки не показательно ввиду значительных индивидуальных колебаний. На величину параметра существенное влияние оказывает возраст, пол, приём алкоголя ?, диета ?.

Тромбиновое время

Кровь берут в пробирку, содержащую 3,8% цитрат натрия (в отношении 1 часть цитрата к 9 частям крови). Полученная плазма стабильна в течении 7 суток при комнатной температуре или 23 суток при 40 С. Плазма стабильна в течении 2 недель при температуре -200 С.

Тромбоциты

При подсчёте важно правильно оценить количество эритроцитов в поле зрения. На величину параметра влияют агрегация тромбоцитов ?, бактерии ?, длительное хранение пробы, микроэритроциты, менструальный цикл, физическая нагрузка ?.

Тропонин (кардиоспецифический)

Биологическим материалом для исследования служит сыворотка и кровь. Определяемый аналит стабилен в пробе при 40 С до 24 часов или при -200 С до 3 месяцев.

Фибриноген

Кровь берут в пробирку, содержащую 3,8% цитрат натрия (в отношении 1 часть цитрата к 9 частям крови). Плазма стабильна в течении нескольких месяцев при температуре -200 С. На величину параметра влияют гепарин, гемолиз, неправильное взятие крови, диабет, воспаление, активация фибринолиза, сердечно-сосудистые заболевания.

Хлор (хлорид)

Для исследования наиболее часто используется сыворотка (плазма) крови (должна быть без следов гемолиза), моча, спинномозговая жидкость. При получении сыворотки или плазмы следует избегать гемолиза!

Холестерин общий

Для исследования используется сыворотка или плазма крови. Не требуется более чем 12-часовое голодание, если необходимо определить один холестерин. Отделить сыворотку от клеток следует в течении не более 2 часов. Проба сыворотки стабильна 5-7 суток при 40 С, 3 месяца при -200 С. Избегать повторного замораживания или оттаивания (!). Однократное определение не показательно.

Щелочная фосфатаза

Взятие крови производят строго натощак, т.к. после еды повышается концентрация кишечного изофермента. Анализ проводить в день взятия крови, т.к. через 4 ч концентрация падает.

Эритроциты

Количество клеток зависит от длительности хранения пробы, агрегации тромбоцитов, наличия в пробе холодовых агглютининов, возраста, пола

#fc3424 #5835a1 #1975f2 #2fc86b #f_syc9 #eef77 #020614063440